1、细胞复苏
(1)从罐中取出冻存管。
(2)迅速放入36℃~37℃水浴,不时摇动,使其急速融化,30~60s内完成。
(3)冻存管用70%酒精擦拭消毒后,打开盖子,用吸管将细胞悬液注入离心管中,再滴加10ml培养液。
(4)低速离心(500~1000r/min) 5min,去上清后再用培养液洗一次。
(5)用培养液适当稀释后,装入培养瓶37℃培养,次日更换一次培养液后,继续培养。以后仍按常规进行培养。
2、细胞培养
(1)吸掉或倒掉培养瓶内旧培养液。
(2)向瓶内加入胰酶少量。以能覆盖培养瓶底为宜。
(3)置37℃孵箱下进行消化,2~5min后把培养瓶放在倒置显微镜下进行观察,当发现胞质回缩、细胞间隙增大后,应立即中止消化。
(4)吸出消化液,然后再加培养液,终止消化。
(5)吸取瓶内培养液,按顺序反复轻轻吹打瓶壁细胞,使之从瓶壁脱离形成细胞悬液。
吹打时动作要轻柔,以防用力过猛损伤细胞。
(6)用计数板计数后,分别接种于新的培养瓶中,置CO2培养箱中进行培养。
(7)细胞培养换液时间应根据细胞生长的状态和实验要求来确定。一般2~3d后应换一次生长液。待细胞铺满器皿底面,即可使用;也可继续传代扩大培养或换成维持液。
3、病毒培养
(1)选长满单层的细胞,倒掉培养液。
(2)加入适量的病毒悬液
(3)置温箱中感作(吸附)45min-1h。
(4)取出瓶子,倒掉或不倒掉培养液,补足维持液,置温箱中继续培养,直至80%以上的细胞病变。
(5)收毒:将病变的细胞置于-20℃冰箱中,冻结后取出自然解冻,在解冻过程中振摇几次,以使细胞完全从瓶壁上脱落。然后将病毒液收集于盐水瓶或其它容器中。低温贮藏备用。
4、毒价测定
(1)在离心管中将病毒液作连续10倍的稀释,从10-1-10-10。
(2)将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中,每一稀释度接种一纵排共8 孔,每孔接种100µl。
(3)在每孔加入细胞悬液100µl,使细胞量达到2~3×105个/ml。
(4)设正常细胞对照,正常细胞对照作两纵排。(100µl生长液+100µl细胞悬液)
(5)逐日观察并记录结果,一般需要观察5-7天。
(6)结果的计算,按Reed-Muench两氏法或Karber法
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